۲.۴۳
۱.۶۵
۱.۹۸
۰.۷۳
۱.۸۸
۱.۸۱
۲.۴۳
۲.۲ مواد استاندارد مورد استفاده در منحنی کالیبراسیون توزیع نسبی جرم مولکولی: انسولین، مایکوپپتیدها، گلیسین-گلیسین-تیروزین-آرژنین، گلیسین-گلیسین-گلیسین
۳ ابزار و تجهیزات
۲۳.۲
۲۱.۴
۲۲.۲
۱۶.۱
۲۲.۳
۲۰.۸
۲۳.۹
۲۷.۵
روی هم رفته، نسبت اسیدهای آمینه در محصولات سوستار بیشتر از محصولات زینپرو است.
بخش ۸ اثرات استفاده
اثرات منابع مختلف مواد معدنی کمیاب بر عملکرد تولیدی و کیفیت تخم مرغ مرغهای تخمگذار در اواخر دوره تخمگذاری
فرآیند تولید
فناوری کیلیت سازی هدفمند
فناوری امولسیون برشی
فناوری اسپری و خشک کردن تحت فشار
فناوری تبرید و رطوبتزدایی
فناوری پیشرفته کنترل محیط زیست
پیوست الف: روشهای تعیین توزیع جرم مولکولی نسبی پپتیدها
پذیرش استاندارد: GB/T 22492-2008
۱- اصل آزمون:
این با استفاده از کروماتوگرافی ژل فیلتراسیون با کارایی بالا تعیین شد. به عبارت دیگر، با استفاده از پرکننده متخلخل به عنوان فاز ساکن، بر اساس تفاوت در اندازه جرم مولکولی نسبی اجزای نمونه برای جداسازی، که در پیوند پپتیدی طول موج جذب فرابنفش 220 نانومتر شناسایی شده است، با استفاده از نرمافزار پردازش داده اختصاصی برای تعیین توزیع جرم مولکولی نسبی توسط کروماتوگرافی ژل فیلتراسیون (یعنی نرمافزار GPC)، کروماتوگرامها و دادههای آنها پردازش و محاسبه شدند تا اندازه جرم مولکولی نسبی پپتید سویا و محدوده توزیع به دست آید.
۲. معرفها
آب مورد آزمایش باید مشخصات آب ثانویه در GB/T6682 را داشته باشد، استفاده از معرفها، به جز موارد خاص، باید از نظر تحلیلی خالص باشد.
۲.۱ معرفها شامل استونیتریل (خالص کروماتوگرافی)، تریفلورواستیک اسید (خالص کروماتوگرافی)،
۲.۲ مواد استاندارد مورد استفاده در منحنی کالیبراسیون توزیع نسبی جرم مولکولی: انسولین، مایکوپپتیدها، گلیسین-گلیسین-تیروزین-آرژنین، گلیسین-گلیسین-گلیسین
۳ ابزار و تجهیزات
۳.۱ کروماتوگراف مایع با کارایی بالا (HPLC): یک ایستگاه کاری کروماتوگرافی یا یکپارچهساز با آشکارساز UV و نرمافزار پردازش دادههای GPC.
۳.۲ واحد فیلتراسیون و گاززدایی خلاء فاز متحرک.
۳.۳ ترازوی الکترونیکی: مقدار مدرج ۰.۰۰۰ ۱ گرم.
۴ مرحله عملیاتی
۴.۱ شرایط کروماتوگرافی و آزمایشهای سازگاری سیستم (شرایط مرجع)
- ۴.۱.۱ ستون کروماتوگرافی: TSKgelG2000swxl300 میلیمتر × ۷.۸ میلیمتر (قطر داخلی) یا سایر ستونهای ژل از همان نوع با عملکرد مشابه، مناسب برای تعیین پروتئینها و پپتیدها.
- ۴.۱.۲ فاز متحرک: استونیتریل + آب + تری فلوئورواستیک اسید = ۲۰ + ۸۰ + ۰.۱.
- ۴.۱.۳ طول موج تشخیص: ۲۲۰ نانومتر.
- ۴.۱.۴ سرعت جریان: ۰.۵ میلیلیتر در دقیقه.
- ۴.۱.۵ زمان تشخیص: ۳۰ دقیقه.
- ۴.۱.۶ حجم تزریق نمونه: ۲۰ میکرولیتر.
- ۴.۱.۷ دمای ستون: دمای اتاق.
- ۴.۱.۸ به منظور برآورده کردن الزامات تشخیص توسط سیستم کروماتوگرافی، مقرر شد که تحت شرایط کروماتوگرافی فوق، راندمان ستون کروماتوگرافی ژلی، یعنی تعداد تئوری صفحات (N)، کمتر از ۱۰۰۰۰ که بر اساس پیکهای استاندارد تریپپتید (گلیسین-گلیسین-گلیسین) محاسبه شده است، نباشد.
- ۴.۲ تولید منحنیهای استاندارد جرم مولکولی نسبی
- محلولهای استاندارد پپتیدی با جرم مولکولی نسبی مختلف فوق با غلظت جرمی 1 میلیگرم در میلیلیتر با تطبیق فاز متحرک تهیه، به نسبت مشخصی مخلوط و سپس از طریق غشای فاز آلی با اندازه منافذ 0.2 میکرومتر تا 0.5 میکرومتر فیلتر شده و به نمونه تزریق شدند و سپس کروماتوگرامهای استانداردها به دست آمد. منحنیهای کالیبراسیون جرم مولکولی نسبی و معادلات آنها با رسم لگاریتم جرم مولکولی نسبی در برابر زمان بازداری یا با رگرسیون خطی به دست آمد.
۴.۳ عملیات نمونهبرداری
10 میلیگرم از نمونه را در یک بالن حجمی 10 میلیلیتری به طور دقیق وزن کنید، کمی فاز متحرک اضافه کنید، به مدت 10 دقیقه با دستگاه اولتراسونیک تکان دهید تا نمونه کاملاً حل و مخلوط شود، با فاز متحرک تا ترازو رقیق شود و سپس از طریق یک غشای فاز آلی با اندازه منافذ 0.2μm ~ 0.5μm فیلتر شود و محلول صاف شده طبق شرایط کروماتوگرافی در بند الف.4.1 تجزیه و تحلیل شود.
- ۵. محاسبه توزیع جرم مولکولی نسبی
- پس از تجزیه و تحلیل محلول نمونه تهیه شده در 4.3 تحت شرایط کروماتوگرافی 4.1، جرم مولکولی نسبی نمونه و محدوده توزیع آن را میتوان با جایگزینی دادههای کروماتوگرافی نمونه در منحنی کالیبراسیون 4.2 با نرمافزار پردازش دادههای GPC بدست آورد. توزیع جرمهای مولکولی نسبی پپتیدهای مختلف را میتوان با روش نرمالسازی مساحت پیک، طبق فرمول زیر محاسبه کرد: X=A/A total×100
- در فرمول: X - کسر جرمی یک پپتید با جرم مولکولی نسبی در کل پپتید موجود در نمونه، %؛
- الف - مساحت پیک یک پپتید با جرم مولکولی نسبی؛
- مجموع A - مجموع مساحت پیکهای هر پپتید با جرم مولکولی نسبی، که تا یک رقم اعشار محاسبه شده است.
- ۶ تکرارپذیری
- اختلاف مطلق بین دو اندازهگیری مستقل که تحت شرایط تکرارپذیری به دست آمدهاند، نباید از ۱۵٪ میانگین حسابی دو اندازهگیری بیشتر باشد.
- پیوست ب: روشهای تعیین اسیدهای آمینه آزاد
- پذیرش استاندارد: Q/320205 KAVN05-2016
- ۱.۲ واکنشگرها و مواد
- اسید استیک یخبندان: از نظر تحلیلی خالص
- اسید پرکلریک: 0.0500 مول بر لیتر
- شناساگر: شناساگر کریستال ویوله ۰.۱٪ (اسید استیک گلاسیال)
- ۲. تعیین اسیدهای آمینه آزاد
نمونهها به مدت ۱ ساعت در دمای ۸۰ درجه سانتیگراد خشک شدند.
نمونه را در یک ظرف خشک قرار دهید تا به طور طبیعی تا دمای اتاق خنک شود یا تا دمای قابل استفاده خنک شود.تقریباً 0.1 گرم نمونه (با دقت 0.001 گرم) را در یک بالن مخروطی خشک 250 میلیلیتری وزن کنید.برای جلوگیری از جذب رطوبت محیط توسط نمونه، به سرعت به مرحله بعدی بروید.۲۵ میلیلیتر اسید استیک گلاسیال اضافه کنید و به مدت حداکثر ۵ دقیقه خوب مخلوط کنید.2 قطره شناساگر کریستال ویوله اضافه کنیدبا محلول تیتراسیون استاندارد اسید پرکلریک با غلظت 0.0500 مول بر لیتر (±0.001) تیتر کنید تا محلول از بنفش به نقطه پایانی تغییر رنگ دهد.
حجم محلول استاندارد مصرف شده را ثبت کنید.
- همزمان آزمایش خالی را انجام دهید.
- ۳. محاسبه و نتایج
- مقدار اسید آمینه آزاد X در معرف به صورت کسر جرمی (%) بیان میشود و طبق فرمول زیر محاسبه میشود: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%، در فرمول tne:
- ج - غلظت محلول استاندارد پرکلریک اسید بر حسب مول در لیتر (mol/L)
- V1 - حجم مورد استفاده برای تیتراسیون نمونهها با محلول استاندارد اسید پرکلریک، بر حسب میلیلیتر (mL).
- Vo - حجم مورد استفاده برای تیتراسیون شاهد با محلول استاندارد اسید پرکلریک، بر حسب میلیلیتر (mL)؛
M - جرم نمونه، بر حسب گرم (g).
| 0.1445: میانگین جرم اسیدهای آمینه معادل 1.00 میلیلیتر محلول استاندارد اسید پرکلریک [c(HClO4) = 1.000 mol/L]. | ۴.۲.۳ محلول تیتراسیون استاندارد سولفات سریم: غلظت c [Ce(SO4)2] = 0.1 مول بر لیتر، تهیه شده طبق استاندارد GB/T601. | |
| تصویب استانداردها: Q/70920556 71-2024 | ۱. اصل تعیین (به عنوان مثال Fe) | کمپلکسهای آهن آمینو اسید حلالیت بسیار کمی در اتانول بیآب دارند و یونهای فلزی آزاد در اتانول بیآب محلول هستند، تفاوت حلالیت بین این دو در اتانول بیآب برای تعیین میزان کیلیت شدن کمپلکسهای آهن آمینو اسید مورد استفاده قرار گرفت. |
| در فرمول: V1 - حجم محلول استاندارد سولفات سریم مصرف شده برای تیتراسیون محلول آزمایش، میلیلیتر؛ | اتانول بدون آب؛ بقیه موارد مشابه بند ۴.۵.۲ در GB/T 27983-2011 است. | ۳. مراحل تحلیل |
| دو آزمایش را به صورت موازی انجام دهید. 0.1 گرم از نمونه خشک شده در دمای 103±2 درجه سانتیگراد به مدت 1 ساعت، با دقت 0.0001 گرم، وزن کنید، 100 میلی لیتر اتانول بی آب اضافه کنید تا حل شود، فیلتر کنید، باقیمانده شسته شده با 100 میلی لیتر اتانول بی آب را حداقل سه بار فیلتر کنید، سپس باقیمانده را به یک بالن مخروطی 250 میلی لیتری منتقل کنید، 10 میلی لیتر محلول اسید سولفوریک را طبق بند 4.5.3 در GB/T27983-2011 اضافه کنید و سپس مراحل زیر را طبق بند 4.5.3 "گرم کنید تا حل شود و سپس بگذارید خنک شود" در GB/T27983-2011 انجام دهید. آزمایش شاهد را همزمان انجام دهید. | ۴. تعیین مقدار کل آهن | ۴.۱ اصل تعیین، همان بند ۴.۴.۱ در GB/T 21996-2008 است. |
۴.۲ معرفها و محلولها
| ۴.۲.۱ اسید مخلوط: ۱۵۰ میلیلیتر اسید سولفوریک و ۱۵۰ میلیلیتر اسید فسفریک را به ۷۰۰ میلیلیتر آب اضافه کرده و خوب مخلوط کنید. | ۴.۲.۲ محلول شناساگر سدیم دی فنیل آمین سولفونات: ۵ گرم در لیتر، مطابق با استاندارد GB/T603 تهیه شده است. | ۴.۲.۳ محلول تیتراسیون استاندارد سولفات سریم: غلظت c [Ce(SO4)2] = 0.1 مول بر لیتر، تهیه شده طبق استاندارد GB/T601. | |
| ۴.۳ مراحل تحلیل | دو آزمایش را به صورت موازی انجام دهید. 0.1 گرم نمونه را با دقت 020001 گرم وزن کنید، آن را در یک بالن مخروطی 250 میلیلیتری قرار دهید، 10 میلیلیتر اسید مخلوط اضافه کنید، پس از حل شدن، 30 میلیلیتر آب و 4 قطره محلول شناساگر دیآنیلین سولفونات سدیم اضافه کنید و سپس مراحل زیر را طبق بند 4.4.2 در GB/T21996-2008 انجام دهید. آزمایش شاهد را همزمان انجام دهید. | ۴.۴ نمایش نتایج | مقدار کل آهن X1 کمپلکسهای آهن اسید آمینه بر حسب کسر جرمی آهن، مقدار بیان شده بر حسب درصد، طبق فرمول (1) محاسبه شد: |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - محلول استاندارد سولفات سریم مصرف شده برای تیتراسیون محلول شاهد، میلیلیتر؛ | V0 - محلول استاندارد سولفات سریم مصرف شده برای تیتراسیون محلول شاهد، میلیلیتر؛ | C - غلظت واقعی محلول استاندارد سولفات سریم، مول بر لیتر۵. محاسبه میزان آهن در کلاتهامقدار آهن X2 در کلات بر حسب کسر جرمی آهن، مقداری که بر حسب درصد بیان میشود، طبق فرمول زیر محاسبه شد: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100 |
| در فرمول: V1 - حجم محلول استاندارد سولفات سریم مصرف شده برای تیتراسیون محلول آزمایش، میلیلیتر؛ | V2 - محلول استاندارد سولفات سریم مصرف شده برای تیتراسیون محلول شاهد، میلیلیتر؛nom1 - جرم نمونه، g. میانگین حسابی نتایج تعیین موازی را به عنوان نتایج تعیین در نظر بگیرید و اختلاف مطلق نتایج تعیین موازی بیش از 0.3٪ نباشد. | 0.05585 - جرم آهن دو ظرفیتی (بر حسب گرم) معادل 1.00 میلیلیتر محلول استاندارد سولفات سریم C[Ce(SO4)2.4H2O] = 1.000 مول بر لیتر.nom1 - جرم نمونه، g. میانگین حسابی نتایج تعیین موازی را به عنوان نتایج تعیین در نظر بگیرید و اختلاف مطلق نتایج تعیین موازی بیش از 0.3٪ نباشد. | ۶. محاسبه نرخ کیلیت شدننرخ کیلیت شدن X3، مقداری که بر حسب درصد بیان میشود، X3 = X2/X1 × 100پیوست ج: روشهای تعیین میزان کیلیتسازی زینپرو |
پذیرش استاندارد: Q/320205 KAVNO7-2016
۱. معرفها و مواد
الف) اسید استیک یخبندان: از نظر تحلیلی خالص؛ ب) اسید پرکلریک: 0.0500 مول بر لیتر؛ ج) شناساگر: 0.1٪ شناساگر کریستال ویوله (اسید استیک یخبندان)
۲. تعیین اسیدهای آمینه آزاد
۲.۱ نمونهها به مدت ۱ ساعت در دمای ۸۰ درجه سانتیگراد خشک شدند.
۲.۲ نمونه را در یک ظرف خشک قرار دهید تا به طور طبیعی تا دمای اتاق خنک شود یا تا دمای قابل استفاده خنک شود.
۲.۳ تقریباً ۰.۱ گرم نمونه (با دقت ۰.۰۰۱ گرم) را در یک بالن مخروطی خشک ۲۵۰ میلیلیتری وزن کنید.
۲.۴ برای جلوگیری از جذب رطوبت محیط توسط نمونه، به سرعت به مرحله بعدی بروید.
۲.۵ ۲۵ میلیلیتر اسید استیک گلاسیال اضافه کنید و به مدت حداکثر ۵ دقیقه خوب مخلوط کنید.
۲.۶ دو قطره شناساگر کریستال ویوله اضافه کنید.
۲.۷ با محلول تیتراسیون استاندارد اسید پرکلریک با غلظت ۰.۰۵۰۰ مول بر لیتر (±۰.۰۰۱) تیتر کنید تا محلول به مدت ۱۵ ثانیه از بنفش به سبز تغییر رنگ دهد، بدون اینکه رنگ نقطه پایانی تغییر کند.
۲.۸ حجم محلول استاندارد مصرفی را ثبت کنید.
۲.۹ آزمایش نمونه شاهد را همزمان انجام دهید.
- ۳. محاسبه و نتایج
- کاتالان
- Physicochemical parameters
V1 - حجم مورد استفاده برای تیتراسیون نمونهها با محلول استاندارد اسید پرکلریک، بر حسب میلیلیتر (mL).
Vo - حجم مورد استفاده برای تیتراسیون شاهد با محلول استاندارد اسید پرکلریک، بر حسب میلیلیتر (mL)؛
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
آدرس: جاده چینگپو، پلاک ۱۴۷، شهر شوآن، شهرستان پوجیانگ، شهر چنگدو، استان سیچوان، چین
تلفن: ۸۶-۱۸۸۸۰۴۷۹۰۲
محصولات
مواد معدنی کمیاب غیرآلی
- مواد معدنی کمیاب آلی
- سواحیلی
- خدمات سفارشی
- پیوندهای سریع
مشخصات شرکت
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| گجراتی | برای استعلام کلیک کنید | © کپیرایت - ۲۰۱۰-۲۰۲۵: تمامی حقوق محفوظ است. | نقشه سایت جستجوی برتر تلفن |
| تلفن | ۸۶-۱۸۸۸۰۴۷۷۹۰۲ | جاوه ای | ایمیل واتساپ |
| ۸۶۱۸۸۸۰۴۷۷۹۰۲ | چینی | فرانسوی | |
| Bird | چینی | فرانسوی | آلمانی اسپانیایی |
| Aquatic animals | ژاپنی | کره ای | عربی یونانی |
| ترکی | ایتالیایی | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | اندونزیایی آفریکانس سوئدی |
لهستانی
- باسک
- کاتالان
- Physicochemical parameters
هندی
لائو
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
شونا
بلغاری
- سبوانو
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- کرواتی
هلندی
| Application object | اردو ویتنامی | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| گجراتی | هائیتیایی | هوسا | کینیارواندایی همونگ مجارستانی |
| Piglets and fattening pigs | ایگبو | جاوه ای | کانارا خمر کردی |
| قرقیز | لاتین | ||
| Bird | 300~400 | 45~60 | مقدونی مالایی مالایالامی |
| Aquatic animals | 200~300 | 30~45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
نروژی
- پشتو
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
صربی
سسوتو
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
شونا
سندی
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
سواحیلی
تاجیک
تامیل
تلوگو
تایلندی
| Application object | اردو ویتنامی | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| ییدیش | یوروبا | زولو | کینیارواندایی اوریا ترکمن |
| اویغوری | 250~400 | 37.5~60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300~400 | 45~60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200~300 | 30~45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100~250 | 15~37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250~350 | 37.5~52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100~200 | 15~30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| ۱.۵۲ | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides(180-500) | Zinpro's products | Proportion of small peptides(180-500) |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025